專利名稱：一種微藻的生物采收方法
技術(shù)領(lǐng)域：
本發(fā)明涉及一種微藻的采收方法，尤其是涉及ー種微藻的生物采收方法。
背景技術(shù)：
微藻是一類由單細(xì)胞或數(shù)個細(xì)胞組成的微小藻類，直徑3 30iim，多為真核生物。微藻生長速度快、単位面積產(chǎn)量高，而且營養(yǎng)豐富，富含蛋白質(zhì)、維生素和不飽和脂肪酸等。廣泛應(yīng)用在生物餌料、保健食品和制藥等領(lǐng)域。近年來，微藻作為生物柴油的應(yīng)用廣受重視。目前，微藻采收成本極高，占到養(yǎng)殖成本的20% 30% (Molina G E, BelarbiE H，Acien Fernandez F G，et a_L. Recovery of Microalgal Biomass andMetabolites:Process Options and Economics. Biotechnol. Adv. ,2003, (20):491-515)。降低采收成本是微藻生產(chǎn)的關(guān)鍵之一。常用的微藻采收方法有絮凝沉降、膜過濾、離心和氣浮分離(林喆，匡亞莉，郭進(jìn)，王章國.微藻采收技術(shù)的進(jìn)展與展望.過程工程學(xué)報，2009，9 (6) : 1242-1248)。絮凝沉降通過添加絮凝劑，使微藻細(xì)胞聚集成大顆粒，使之能夠自然沉降，實現(xiàn)微藻細(xì)胞與培養(yǎng)液的分離。目前常用的絮凝劑包括金屬鹽類(硫酸鋁、氯化鋁、硫酸鐵等)和高分子聚合物(聚合硫酸鐵、聚合氯化鋁、殼聚糖等)(張亞杰，羅生軍，蔣禮玲，郭榮波.陽離子絮凝劑對小球藻濃縮收集效果的研究.可再生能源，2010，28 (3) :35-38;林喆，匡亞莉，郭迸，王章國.微藻采收技術(shù)的進(jìn)展與展望.過程工程學(xué)報，2009，9 (6): 1242-1248)。絮凝沉淀操作簡單，但是由于微藻細(xì)胞與培養(yǎng)液密度差異小，所需絮片體積較大，絮凝、沉降所需時間長。而且絮凝劑在后續(xù)エ藝的去除難度大，成本高。膜過濾是通過濾膜實現(xiàn)微藻和其培養(yǎng)液的分離(宮慶禮，崔建洲，潘克厚，郭春，劉忠英.超濾技術(shù)在單胞藻濃縮中的應(yīng)用.海洋科學(xué)，2004，28 (I) :44-47 ;周瑋，于建華，杜萌萌，王國棟.單胞藻超濾濃縮技術(shù)的研究.水產(chǎn)科學(xué)，2008，27 (5) :230-233;林喆，匡亞莉，郭進(jìn)，王章國.微藻采收技術(shù)的進(jìn)展與展望.過程工程學(xué)報，2009，9 ￠) : 1242-1248)。微藻細(xì)胞的大小是影響過濾最主要的因素。細(xì)胞個體較大或者以群體形式存在的微藻不易堵塞濾膜，但是細(xì)胞個體小的微藻會令濾膜在短時間內(nèi)失效。膜過濾的壓カ對微藻細(xì)胞活性影響大，特別是對無細(xì)胞壁的微藻，常會造成細(xì)胞膜的破碎。膜過濾在小規(guī)模的微藻采收中效果較好，但是エ業(yè)規(guī)模的微藻濃縮成本高、效率低，不易直接采用。離心是通過微藻和其培養(yǎng)液密度的差異在離心カ場的作用下迅速沉降分層，從而實現(xiàn)微藻和其培養(yǎng)液的分離。離心分離效率高、但能耗高，是目前エ業(yè)規(guī)模培養(yǎng)微藻應(yīng)用最廣泛的一種采收方法。氣浮分離是利用上升氣流對溶液中固體物質(zhì)吸附實現(xiàn)與母液的分離，常用于礦物濃集、分離和污水處理(呂玉娟，張雪利.氣浮分離法的研究現(xiàn)狀和發(fā)展方向.エ業(yè)水處理，2007, 27(1) : 58-61)。在進(jìn)行微藻采收時一般需要向培養(yǎng)液中添加絮凝劑，使微藻細(xì)胞產(chǎn)生絮凝，然后再產(chǎn)生微細(xì)氣泡，氣泡在上浮過程中遇到絮凝體則吸附其上，將絮凝體帶到培養(yǎng)液表面，然后由刮板刮入貯槽，實現(xiàn)微藻的采收。氣浮分離エ藝復(fù)雜，能耗較高，高效產(chǎn)生微氣泡是需要解決的重要問題。微藻是水生生態(tài)系統(tǒng)中最主要的初級生產(chǎn)者，以微藻作為食物來源的動物種類繁多。其中濾食性雙殼貝類，如扇貝、貽貝、菲律賓蛤仔具有很強的濾水能力，利用攝食器官把水體中的微藻分離出來作為食物。濾食性雙殼貝類具有極高的分離微藻的效率，能夠在微藻濃度很低的情況下，高效的分離水體中的微藻。濾食性雙殼貝類分離微藻是通過外套膜、鰓以及唇瓣等器官相互配合完成的。當(dāng)濾食性雙殼貝類處于高濃度的微藻環(huán)境時，食物供給遠(yuǎn)遠(yuǎn)過剩，會形成大量的“假糞”將過濾后的微藻 排出體外。并且進(jìn)入消化道的微藻也因為持續(xù)的大量的攝食大部分不被消化排出體外。利用濾食性雙克貝類這ー生物學(xué)特性可以實現(xiàn)對微藻的濃縮分離。

發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明的目的在于提供一種微藻的生物采收方法。本發(fā)明包括以下步驟I)將雙殼貝類暫養(yǎng)在水池中進(jìn)行貝類凈化；2)浄化后的貝類進(jìn)行凈化效果檢測，具體方法為隨機抽取30個個體，用蒸餾水漂洗干凈，打開貝殼，取軟體組織用勻漿器搗碎組織，進(jìn)行微生物和揮發(fā)性鹽基氮的檢測。在步驟I)中，所述凈化可首先將雙殼貝類的貝殼表面清洗干凈，剔除死亡個體和貝殼破損個體，然后將雙殼貝類排放到可漏水盤中，所述可漏水盤的尺寸可為60mmX 40mmX 15mm,姆IOkg 一盤,將100盤放到6mX4mX I. 2m的凈化水池中；將達(dá)到漁業(yè)用海水水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)的浄化海水用紫外線照射，劑量達(dá)到300J/m2，然后注入浄化水池，使水深達(dá)到50cm,水溫保持20 25°C ,用增氧機保持溶氧在4mg/L以上,姆8h換水一次,總凈化時間48h。在凈化過程中發(fā)現(xiàn)死亡個體即時清除，經(jīng)過48h浄化后要再次剔除死亡個體和貝殼破損個體。在步驟2)中，所述微生物檢測是大腸桿菌和沙門氏菌按國標(biāo)GB4789.3、GB4789. 31的方法檢測；所述揮發(fā)性鹽基氮檢測的具體方法包括揮發(fā)性鹽基氮按國標(biāo)GB/T5009. 44的方法檢測；砂份測定按福建省地方標(biāo)準(zhǔn)凈化海水貝類DB35/575-2004 4. 2. 2b的方法測定；汞、無機砷、鉛、鎘、銅按照國標(biāo)GB/T5009. 17、GB/T5009. 11、GB/T5009. 12、GB/T5009. 15、GB/T5009. 13 測定；六六六、滴滴涕和多氯聯(lián)苯按照國標(biāo)GB/T5009. 19、GB/T5009. 190測定；麻痹性貝毒和腹瀉性按照SN. 0352、SN. 0294測定；測定結(jié)果要達(dá)到DB35/575-2004標(biāo)準(zhǔn)，如果超標(biāo)，需再次浄化或者更換貝類后再凈化，直至符合DB35/575-2004標(biāo)準(zhǔn)。與現(xiàn)有的同類方法比較，本發(fā)明具有以下突出優(yōu)點I)成本低利用濾食性雙殼貝類的攝食系統(tǒng)進(jìn)行微藻的采收分離，充分利用了生物的機能。不像離心和氣浮分離需要消耗能量。而且鮮活的濾食性雙殼貝類價格低，可以重復(fù)使用，不像絮凝沉淀樣毎次都有添加絮凝劑。在進(jìn)行微藻采收時貝類可以正常存活，死亡率極低，不像膜過濾需要經(jīng)常維護(hù)清洗濾膜。2)效率較高濾食性雙殼貝類的攝食系統(tǒng)經(jīng)過長時間的進(jìn)化，是ー套高效率的微藻采收分離系統(tǒng)，幾乎能夠?qū)崿F(xiàn)對微藻100%的采收分離。因此可以實現(xiàn)100%的微藻與培養(yǎng)液分離。由于貝類濾食的微藻一部分要進(jìn)過消化道進(jìn)行消化，所以獲得微藻分離物含有部分被消化的微藻。這個比例可以通過假糞比例與微藻濃度的回歸關(guān)系確定。在優(yōu)化采收參數(shù)的情況下，假糞的比例可以占到貝類采收微藻的80%以上。正常情況貝類的消化率為80%左右，進(jìn)行消化道的微藻有20%沒有被消化，可以作為正常微藻看待。因此采用濾食性雙克貝類可以實現(xiàn)80%以上的微藻采收效率。 3)微藻傷害低濾食性雙殼貝類的攝食系統(tǒng)是通過對水流的控制和纖毛的擺動及分泌粘液來實現(xiàn)微藻采收分離的。在整個過程中沒有劇烈的物理、化學(xué)處理過程。避免了現(xiàn)有的微藻采收方法對微藻細(xì)胞的傷害。微藻細(xì)胞能夠保持正常的結(jié)構(gòu)功能。這非常有利于后續(xù)提取微藻的生物活性物質(zhì)。4)微藻濃度適用范圍廣該方法對微藻的采收效率和成本不會因為微藻密度過低而發(fā)生劇烈變化。理論上只要微藻濃度在濾食性雙殼貝類的假糞閾值之上都可以實現(xiàn)微藻的有效采收。而不像現(xiàn)有的微藻采收方法在低濃度時成本會急劇上升，而效率則下降。這特別適合用于以池塘或水泥池為代表室外開放式培育微藻的采收。這種培養(yǎng)方式微藻濃度一般不會太高。但是因水體巨大其微藻總產(chǎn)量很大。同時微藻培養(yǎng)的成本低，是目前微藻培養(yǎng)的主流方式。
具體實施例方式本發(fā)明包括以下步驟I)將雙殼貝類暫養(yǎng)在水池中進(jìn)行貝類凈化；所述凈化可首先將雙殼貝類貝殼表面清洗干凈，剔除死亡個體和貝殼破損個體，然后將貝類排放到可漏水塑料盤中，所述可漏水塑料盤的尺寸可為60_X40_X15mm，每IOkg ー盤,將100盤放到6mX4mX I. 2m的凈化水池中；將達(dá)到漁業(yè)用海水水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)的凈化海水用紫外線照射，劑量達(dá)到300J/m2，然后注入浄化水池，使水深達(dá)到50cm，水溫保持20 25°C，用增氧機保持溶氧在4mg/L以上，每8h換水一次，總凈化時間48h。在凈化過程中發(fā)現(xiàn)死亡個體即時清除，經(jīng)過48h浄化后要再次剔除死亡個體和貝殼破損個體。2)浄化后的貝類進(jìn)行凈化效果檢測，具體方法為隨機抽取30個個體，用蒸餾水漂洗干凈，打開貝殼，取軟體組織用勻漿器搗碎組織，進(jìn)行微生物和揮發(fā)性鹽基氮的檢測；所述微生物和揮發(fā)性鹽基氮的檢測的具體方法可為大腸桿菌和沙門氏菌按國標(biāo)GB4789. 3、GB4789. 31的方法檢測；揮發(fā)性鹽基氮按國標(biāo)GB/T5009. 44的方法檢測；砂份測定按福建省地方標(biāo)準(zhǔn)凈化海水貝類DB35/575-2004 4. 2. 2b的方法測定；汞、無機砷、鉛、鎘、銅按照國標(biāo)GB/T5009. 17、GB/T5009. 11、GB/T5009. 12、GB/T5009. 15、GB/T5009. 13 測定；
六六六、滴滴涕和多氯聯(lián)苯按照國標(biāo)GB/T5009. 19、GB/T5009. 190測定；麻痹性貝毒和腹瀉性按照SN. 0352、SN. 0294測定；測定結(jié)果要達(dá)到DB35/575-2004標(biāo)準(zhǔn)，如果超標(biāo)，需再次浄化或者更換貝類后再凈化，直至符合DB35/575-2004標(biāo)準(zhǔn)。
以下給出微藻采收技術(shù)參數(shù)的確定影響微藻生物采收效率的主要因素是濾食性雙殼貝類清濾率和假糞比例。而這兩個因素會受到微藻濃度、溫度和貝類種類的影響。需要根據(jù)實際情況進(jìn)行測算。具體的測算方法如下I)濾食性雙殼貝類清濾率影響因子的優(yōu)化清濾率CR(Clearnce rate)是指濾食性生物在單位時間內(nèi)濾食懸浮顆粒物時所過濾的水體積。其主要的影響因子是溫度、生物學(xué)規(guī)格(體重)和微藻濃度。根據(jù)已有文獻(xiàn)的報道大部分濾食性雙殼貝類的成體具有最高的清濾率，因此不需要進(jìn)行不同生物學(xué)規(guī)格清濾率的測定。只需要對最優(yōu)清濾率的溫度和微藻濃度進(jìn)行測定。( I)最佳溫度的測定溫度設(shè)置16°C、18°C、20°C、22°C、24°C、26°C、28°C、30°C，用 50L 的玻璃缸充氣靜
水系統(tǒng)進(jìn)行最佳溫度的測定。每個實驗的每組都設(shè)4個重復(fù)，設(shè)置2個對照組。對照組缸中只放微藻，不放雙殼貝類，微藻密度和實驗組的微藻濃度相同，以校正微藻自身的繁殖和沉降對其濃度變化的影響。玻璃缸中用氣石充氣使微藻混合均勻并保證雙殼貝類有充足的氧氣，氣石中以不攪動缸底糞便為準(zhǔn)。實驗期間用顯微鏡監(jiān)測微藻密度的變化，使微藻密度的變化幅度在20% 30%之間，這樣既能產(chǎn)生易于測定的濃度差，又不致因濃度變化太大而影響動物在特定濃度下的攝食。(2)微藻濃度的計算用海水中懸浮的總顆粒物TPM(Total Particulate Matter)和顆粒有機物POM(Particulate Organic Matter)作為測定指標(biāo)。TPM和POM測定的方法如下將玻璃纖維濾紙(GF/C Whatman,孔徑I. 2iim)用蒸餾水清洗后，在馬福爐中(4500C )灼燒6h，然后稱重獲得Wtl并標(biāo)記玻璃纖維濾紙。抽濾一定體積的水樣(如IOOOmL),得到的濾物用0. 5M的甲酸銨(約IOmL)漂洗掉鹽分后在110°C下烘干至恒重，稱重(Wlltl)；再在450°C馬福爐中灼燒6h后稱重(W45tl)。稱重使用分析天平(精確到0. OOOlg)。按以下公式計算POM和TPM的值POM=W110-W450, TPM=W110-W0(3)最佳微藻濃度的測定微藻濃度設(shè)置lmg/L、10mg/L、20mg/L、40mg/L、80mg/L、160mg/L、320mg/L、640mg/し其它同最佳溫度測定。上述獲得結(jié)果根據(jù)下列公式進(jìn)行計算CR= [ (InC0-InCt) - (lnC，0_lnC，t) ] X V/t其中CR為清濾率OVhhCtl為實驗組開始的微藻密度(mg/L)，Ct為實驗組結(jié)束時微藻密度(mg/L) ;C’ ^為相應(yīng)對照組開始的微藻密度(mg/L)，C’ t為相應(yīng)對照組結(jié)束時微藻密度(mg/L)，t為實驗進(jìn)行的時間(h)。計算結(jié)果獲得不同微藻密度下清濾率。利用單因素方差分析和Duncan多重比較進(jìn)行數(shù)據(jù)處理，獲得最高清濾率的溫度和微藻密度。微藻采收時將采用該溫度和微藻密度作為主要的技術(shù)參數(shù)值。2)不同微藻密度下濾食性雙殼貝類“假糞”比例計算及假糞閾值的確定“假糞”和糞便非常容易區(qū)分，在外形和顔色上也明顯區(qū)別?！凹偌S”松散、束狀、顏色與投喂微藻顔色一致，糞便緊密、小球狀、褐色?！凹偌S”由于沒有經(jīng)過消化道，其內(nèi)含的微藻細(xì)胞沒有經(jīng)過消化，在顯微鏡下微藻細(xì)胞結(jié)構(gòu)完整。而糞便由于經(jīng)過消化道的消化微藻細(xì)胞結(jié)構(gòu)被破壞。假糞生成的比例主要受微藻密度影響，需要通過實驗來確定假糞與微藻密度的關(guān)系，以確定微藻生物采收的最優(yōu)參數(shù)。假糞與微藻密度關(guān)系測定同樣用50L的玻璃缸充氣靜水系統(tǒng),其它均同最佳微藻濃度的測定。實驗時間為3h，收集假糞和糞便。然后將雙殼貝類放置到IOOOmL的燒杯，每24h收集假糞和糞便一次，收集至72h為止。假糞和糞便中的POM和TPM同樣的方法測定。
根據(jù)下列公式計算微藻清除生物量BAC (Biomass of Algae Cleared from thewater column)BAC= [ (C0-Ct) - (C，Q-C，t) ] X V其中=Ctl為實驗組開始的微藻密度(mg/L)，Ct為實驗組結(jié)束時微藻密度(mg/L)，C’ ^為相應(yīng)對照組開始的微藻密度(mg/L)，C’ t為相應(yīng)對照組結(jié)束時微藻密度(mg/L)。假糞比例％P計算如下%P= (P/BAC) X 100其中P為假糞重量(mg)。計算結(jié)果獲得不同微藻密度下假糞產(chǎn)生的比例。利用單因素方差分析和Duncan多重比較進(jìn)行數(shù)據(jù)處理，獲得最高假糞比例的微藻密度。取°/ポ的反正弦值與微藻密度建立直線回歸方程，根據(jù)方程可計算假糞閾值。當(dāng)微藻濃度達(dá)到一定程度時，清濾率一般保持不變，繼續(xù)增加濃度，清濾率會急劇下降。以清濾率保持不變的最大微藻濃度作為最優(yōu)微藻濃度。一般情況下，微藻培養(yǎng)獲得濃度都會大于最優(yōu)微藻濃度，可以通過添加或扣除營養(yǎng)鹽的培養(yǎng)介質(zhì)(海水或者淡水)調(diào)整到最優(yōu)微藻濃度。結(jié)合建立的假糞比例與微藻濃度的回歸關(guān)系，計算微藻采收的效率。以下給出微藻的生物采收過程準(zhǔn)備2個緊鄰的6mX4mX I. 2m水池，分別作為采收池和儲備池。在采收池距水池底部40cm的高度，用直徑350mm的PVC塑料管搭建架子，用來放置可漏水塑料盤中(60mmX40mmX 15mm)。將凈化后的貝類排放到可漏水塑料盤中(60mmX 40mmX 15mm),姆Ikg—盤，將50個塑料盤均勻的擺置到架子上。均勻放置16個氣石，水平位置要在兩個塑料盤中間，距離水池底部30cm,用增氧機充氣保持溶氧在4mg/L以上。微藻的生長速度因種類而有所差別，接種后I 2天，微藻増殖不明顯，處于適應(yīng)環(huán)境的靜止期。然后進(jìn)入快速生長的指數(shù)生長期，微藻藻細(xì)胞分裂加快，微藻的密度增長明顯。經(jīng)過10-20天的快速生長后進(jìn)入平臺期，這時微藻細(xì)胞生長減緩。一般在指數(shù)生長后期或平臺初期進(jìn)行微藻采收。這時藻液(主要含有海水和微藻)中微藻的密度最大，采收獲得生物量最大。采收時，將藻液用潛水泵注入采收池。按照獲得最高清濾率的微藻密度，通過添加浄化海水來調(diào)節(jié)微藻密度，最后使水位達(dá)到80cm左右。在儲備池中也用潛水泵注入藻液，使藻液水位達(dá)到60cm左右。采收池注入藻液后用分光光度計測量藻液680nm的吸光度。此后每Ih測量I次，當(dāng)吸光度下降10%后，用每h上水量大于2噸的潛水泵，將藻液從儲備池泵到采收池，將微藻濃度調(diào)整為初始濃度。當(dāng)采收池水位到達(dá)I. Im時，用潛水泵將藻液再泵回儲備池，直至水位下降到80cm左右。當(dāng)沒法用儲備池的藻液來調(diào)節(jié)采收池 中微藻密度時，可以更新儲備池中的藻液，這樣就可以繼續(xù)調(diào)整微藻密度繼續(xù)采收。也可以停止調(diào)整微藻密度，繼續(xù)進(jìn)行微藻采收直至采收池中的微藻被全部采收完畢(吸光度接近海水的吸光度)，然后將采收池中的水排放至40cm，把儲備池中的藻液再泵入到采收池中，繼續(xù)采收至采收完畢。每2h用虹吸的方法收集采收池底部的沉積物(主要成分是假糞)，用120目的篩絹過濾，既獲得濃縮微藻。每24h將采收池徹底排干，移走架子、塑料盤和貝類，收集假糞獲得濃縮微藻后，用紫外線照射海水徹底清洗。然后繼續(xù)第二輪的微藻采收，如此可進(jìn)行微藻的循環(huán)采收。
權(quán)利要求
1.一種微藻的生物采收方法，其特征在于包括以下步驟 1)將雙殼貝類暫養(yǎng)在水池中進(jìn)行貝類凈化； 2)浄化后的貝類進(jìn)行凈化效果檢測，具體方法為 隨機抽取30個個體，用蒸餾水漂洗干凈，打開貝殼，取軟體組織用勻漿器搗碎組織，進(jìn)行微生物和揮發(fā)性鹽基氮的檢測。
2.如權(quán)利要求I所述的ー種微藻的生物采收方法，其特征在于在步驟I)中，所述凈化是首先將雙殼貝類的貝殼表面清洗干凈，剔除死亡個體和貝殼破損個體，然后將雙殼貝類排放到可漏水盤中，所述可漏水盤的尺寸為60mmX40mmX 15mm,姆IOkg—盤,將100盤放到6mX4mX I. 2m的浄化水池中；將達(dá)到漁業(yè)用海水水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)的浄化海水用紫外線照射，劑量達(dá)到300J/m2，然后注入浄化水池，使水深達(dá)到50cm，水溫保持20 25°C，用增氧機保持溶氧在4mg/L以上，每8h換水一次，總凈化時間48h。
3.如權(quán)利要求I所述的ー種微藻的生物采收方法，其特征在于在步驟2)中，所述微生物檢測是大腸桿菌和沙門氏菌按國標(biāo)GB4789. 3、GB4789. 31的方法檢測。
4.如權(quán)利要求I所述的ー種微藻的生物采收方法，其特征在于在步驟2)中，所述揮發(fā)性鹽基氮檢測的具體方法包括 揮發(fā)性鹽基氮按國標(biāo)GB/T5009. 44的方法檢測； 砂份測定按福建省地方標(biāo)準(zhǔn)凈化海水貝類DB35/575-2004 4. 2. 2b的方法測定； 汞、無機砷、鉛、鎘、銅按照國標(biāo) GB/T5009. 17、GB/T5009. 11、GB/T5009. 12、GB/T5009. 15、GB/T5009. 13 測定； 六六六、滴滴涕和多氯聯(lián)苯按照國標(biāo)GB/T5009. 19、GB/T5009. 190測定； 麻痹性貝毒和腹瀉性按照SN. 0352、SN. 0294測定； 測定結(jié)果要達(dá)到DB35/575-2004標(biāo)準(zhǔn)，如果超標(biāo)，需再次浄化或者更換貝類后再浄化，直至符合DB35/575-2004標(biāo)準(zhǔn)。
全文摘要
一種微藻的生物采收方法，涉及一種微藻的采收方法。將雙殼貝類暫養(yǎng)在水池中進(jìn)行貝類凈化；凈化后的貝類進(jìn)行凈化效果檢測，具體方法為隨機抽取30個個體，用蒸餾水漂洗干凈，打開貝殼，取軟體組織用勻漿器搗碎組織，進(jìn)行微生物和揮發(fā)性鹽基氮的檢測。成本低、效率較高、微藻傷害低和微藻濃度適用范圍廣。
文檔編號C02F3/02GK102746993SQ201210250439
公開日2012年10月24日 申請日期2012年7月19日 優(yōu)先權(quán)日2012年7月19日
發(fā)明者張麗莉, 王國棟 申請人:集美大學(xué)