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一種結(jié)合串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5的Dof蛋白質(zhì)的制作方法與工藝

文檔序號:12014938閱讀:534來源:國知局
一種結(jié)合串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5的Dof蛋白質(zhì)的制作方法與工藝
本發(fā)明涉及一種結(jié)合串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5的Dof蛋白質(zhì),尤其涉及一種可以結(jié)合植物串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5的Dof蛋白因子及其編碼基因,屬于生物技術(shù)領(lǐng)域。

背景技術(shù):
轉(zhuǎn)錄因子也稱為反式作用因子,它通過影響或控制特定基因的表達(dá)而參與許多重要的生物過程,如:信號轉(zhuǎn)導(dǎo)、形態(tài)發(fā)生、環(huán)境應(yīng)激反應(yīng)等等。眾所周知,轉(zhuǎn)錄因子可以結(jié)合啟動子區(qū)的順勢調(diào)控元件進(jìn)而調(diào)節(jié)基因的轉(zhuǎn)錄速率,另外,轉(zhuǎn)錄因子也可以介導(dǎo)蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用(NatRevGenet2004,5:276-287)。目前,人們已鑒定了許多轉(zhuǎn)錄因子基因家族,這其中有許多是植物特異性的,如WRKY家族、R2R3-MYB家族、bZIP家族、MADS家族等等。Dof(DNAbindingwithonefinger)蛋白也是一類植物特有的轉(zhuǎn)錄因子,它通常含有兩個結(jié)構(gòu)域:一個是N-末端的DNA結(jié)合結(jié)構(gòu)域;另一個是C-末端的調(diào)控結(jié)構(gòu)域。其中,N-末端的結(jié)合域含有4個位置保守的Cys,它可以形成C2-C2鋅指結(jié)構(gòu)。這些結(jié)構(gòu)域參與了不同調(diào)控蛋白或信號的結(jié)合,因而呈現(xiàn)多種生物功能,如:植物抗性(PlantJ1996,10:955-966)、種子儲存蛋白合成(ProcNatlAcadSciUSA1997,94:7685-7690)、植物生長素和赤霉素響應(yīng)(PlantCell1999,11:323-334;BiochimBiophysActa2001,1520:54-62)、碳水化合物代謝(PlantCell1998,10:75-89)、種子萌發(fā)(PlantCell2002,14:1253-1263)、光控植物開花(TrendsPlantSci2006,11:550-558)、細(xì)胞循環(huán)調(diào)節(jié)(PlantJ2008,56:779-792)等等。Dof蛋白還可以通過與其它轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合參與生物活性,如:Dof轉(zhuǎn)錄因子(OBP1)與bZIP轉(zhuǎn)錄因子(OBF4、OBF5)作用可以促進(jìn)后者與靶DNA的結(jié)合(PlantCell1995,7:2241-2252);小麥WPBF與TaQM作用可以促進(jìn)參與種子發(fā)育的阿爾法麩朊蛋白的轉(zhuǎn)錄(PlantMolBiol2007,63:73–84)。許多試驗表明Dof蛋白與AAAG基序特異性結(jié)合(TrendsPlantSci2002,7:555-560)。Dof蛋白通過結(jié)合啟動子上的AAAG基序激活轉(zhuǎn)錄,而啟動子中該序列的突變往往導(dǎo)致轉(zhuǎn)錄的消失(PlantCell1998,10:75-89;PlantJ2001,28:455-464)。番茄Dof基因通過結(jié)合KST1啟動子區(qū)的TAAAG基序誘導(dǎo)基因在保衛(wèi)細(xì)胞中的表達(dá)(PlantJ2001,28:455–464)。然而,至今還沒有Dof轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合串聯(lián)重復(fù)序列的報道。本發(fā)明鑒定了一可以結(jié)合串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5的Dof蛋白質(zhì),而前期實驗(ZL201210087731.5)表明該串聯(lián)重復(fù)序列具有提高植物基因表達(dá)活性的特征,因而,該Dof蛋白質(zhì)具有潛在的調(diào)控基因表達(dá)活性的功能。

技術(shù)實現(xiàn)要素:
本發(fā)明的一個目的是提供一種結(jié)合串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5的Dof蛋白質(zhì)及其編碼基因。本發(fā)明提供的Dof蛋白質(zhì)是一種轉(zhuǎn)錄因子,來源于擬南芥(Arabidopsisthaliana,Columbiaecotype),具有SEQIDNO.1所示的氨基酸序列。本發(fā)明提供的Dof蛋白質(zhì),其編碼基因為如下(1)或(2)所示的核苷酸序列:(1)具有SEQIDNO.2所示的核苷酸序列;(2)與(1)限定的DNA序列至少具有不低于70%同源性且編碼植物轉(zhuǎn)錄因子相關(guān)的核苷酸序列。本發(fā)明提供的可以結(jié)合串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5的Dof蛋白質(zhì)是由酵母單雜交實驗獲得,并且其結(jié)合方式已被EMSA(電泳遷移率實驗)實驗證實。本發(fā)明還提供一種含有Dof蛋白編碼序列的重組載體pUC-Dof。本發(fā)明還提供一種含有Dof蛋白編碼序列的重組表達(dá)載體pET-Dof。本發(fā)明還提供一種重組菌,由重組載體pUC-Dof轉(zhuǎn)化所得。本發(fā)明還提供一種重組菌,由重組載體pET-Dof轉(zhuǎn)化所得。本發(fā)明還提供一種含有三個拷貝的串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5基因片段的重組載體pHIS2-TR;一種含有重組載體pHIS2-TR的重組大腸桿菌;一種含有重組質(zhì)粒pHIS2-TR的重組酵母菌。本發(fā)明的有益效果:利用現(xiàn)有分子生物學(xué)技術(shù),本發(fā)明首次得到一種可以結(jié)合(TTTACAC)5的Dof轉(zhuǎn)錄因子,它們的結(jié)合已經(jīng)酵母單雜交實驗及EMSA實驗驗證。前期實驗(ZL201210087731.5)表明該串聯(lián)重復(fù)序列具有提高植物基因表達(dá)活性的特征,這對于闡明調(diào)控基因表達(dá)機制具有重要的理論價值,因此在生產(chǎn)實踐中也具有重要意義。附圖說明圖1為pHIS2-TR菌液PCR鑒定圖圖2為pHIS2-TR質(zhì)粒酵母轉(zhuǎn)化結(jié)果圖3為文庫轉(zhuǎn)化效率結(jié)果圖4為Dof蛋白與串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5酵母單雜交結(jié)果圖5為EMSA驗證Dof蛋白與該串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5的結(jié)合。具體實施方式下面根據(jù)具體實施例對本發(fā)明進(jìn)一步的詳細(xì)描述,但本發(fā)明的保護(hù)范圍并不僅限于此。實施例1:串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5片段(命名為TR)合成及其與pUC18克隆載體鏈接合成三個拷貝的串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5片段,并在其首尾同時加上EcoRI(識別序列為5’-GAATTC-3’)、SacI(識別序列為5’-GAGCTC-3’)、sfiIA(識別序列為5’-GGCCATTACGGCC-3’)和sfiIB(識別序列為5’-GGCCGCCTCGGCC-3’)酶切位點,合成序列信息如下5’-GAATTCGGCCATTACGGCCTTTACACTTTACACTTTACACTTTACACTTTACACTTTACACTTTACACTTTACACTTTACACTTTACACTTTACACTTTACACTTTACACTTTACACTTTACACGGCCGCCTCGGCCGAGCTC-3’,其中下劃線處為添加的酶切位點,該基因片段由上海桑尼生物科技有限公司合成。該片段與pUC18-T載體(購自大連寶生物)鏈接后轉(zhuǎn)化大腸桿菌Top10感受態(tài)細(xì)胞(購自上海捷瑞生物工程有限公司),命名為pUC-TR,進(jìn)行擴增和質(zhì)粒提取,獲得足夠量的目的片段。實施例2:TR片段與酵母單雜交誘餌載體pHIS2鏈接對實施例1中獲得的pUC-TR質(zhì)粒進(jìn)行EcoRI/SacI雙酶切,切開的片段鏈接到相同雙酶切的pHIS2(購自上海??粕锛夹g(shù)有限公司)載體上,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)后長出的轉(zhuǎn)化子(pHIS2-TR),隨機挑取12個轉(zhuǎn)化子接種于帶卡那抗性的液體LB培養(yǎng)基,于37℃,250rpm振蕩培養(yǎng)16h(過夜)后,分別取1μL菌液進(jìn)行PCR擴增,將產(chǎn)物用2%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳鑒定。實驗表明:空載體可以擴增出約150bp的片段,而成功插入目的片段的載體可以擴出300bp左右的片段,由圖1可見,條帶1,2,5,7,12可能為成功插入目的片段的轉(zhuǎn)化子。對其進(jìn)行進(jìn)一步測序鑒定后,經(jīng)比對確定其序列正確。實施例3:pHIS2-TR質(zhì)粒轉(zhuǎn)化酵母從YPDA(完全培養(yǎng)基)平板上挑取Y187酵母菌落接種于3mLYPDA液體培養(yǎng)基,30℃,220rpm,振蕩培養(yǎng)18-20小時。轉(zhuǎn)接YPDA液體培養(yǎng)基,培養(yǎng)體積為50mL,使初始OD600=0.2,30℃,220rpm,振蕩培養(yǎng)4-5小時,至OD600=0.6。然后,室溫下1000g離心5min收集菌體。用20mL無菌水重懸菌體,混勻,室溫下1000g,離心5min收集菌體,棄上清。用5mL0.1MLiAc(醋酸鋰)重懸菌體,混勻,室溫下1000g,離心5min收集菌體,棄上清。用1mL0.1MLiAc重懸菌體,混勻,分裝至1.5mL離心管,每個100μL,備用。在每個1.5mL離心管中依次加入240μL50%PEG3350、36μL1MLiAc、25μLssDNA(10mg/mL)、5μLpHIS2-TR質(zhì)粒,用槍頭吹打混勻或劇烈震蕩1min左右,至完全混勻。30℃水浴孵育,30min后再42℃水浴熱激,25min,然后再30℃水浴復(fù)蘇,1小時。室溫下700g離心5min,棄上清。用100μL無菌水懸浮菌液,溫和混勻,涂布在SD-Trp-His+50mM3AT缺陷平板上,30℃恒溫培養(yǎng)3-4天,結(jié)果如圖2,已獲得pHIS2-TR質(zhì)粒轉(zhuǎn)化酵母。實施例4:酵母單雜交篩庫用實施例3中含有正確pHIS2-TR誘餌載體的酵母菌Y187作為受體菌制備感受態(tài),將擬南芥cDNA酵母單雜交文庫(購自上海??粕锛夹g(shù)有限公司)質(zhì)粒轉(zhuǎn)入其中,涂SD-Trp-Leu-His+50mM3AT平板。具體實驗步驟如下:從SD-Trp-Leu-His+50mM3AT平板挑取單克隆菌種接于液體SD-Trp-Leu-His+50mM3AT培養(yǎng)基3mL,在30℃,250rpm振蕩培養(yǎng)8h。將3mL菌液全部轉(zhuǎn)接至SD-Trp-Leu-His+50mM3AT液體培養(yǎng)基50mL,30℃,250rpm,振蕩培養(yǎng)過夜,12-14h。然后再轉(zhuǎn)接于600mLYPDA液體培養(yǎng)基中,使初始OD600=0.2,30℃,250rpm,振蕩培養(yǎng)4-5h,至OD600=0.6。室溫下1000g離心5min,收集菌體。用30mL無菌水重懸菌體,混勻,室溫下1000g離心5min,收集菌體,棄上清。然后再用10mL0.1MLiAc重懸菌體,混勻,室溫下1000g離心5min,收集菌體,棄上清。用5mL0.1MLiAc重懸菌體,混勻,室溫下1000g離心5min,收集菌體,棄上清。向離心管中依次加入9.6mL50%PEG3350、1.44mL1MLiAc、800μLssDNA(10mg/mL)、25μg擬南芥cDNA酵母單雜交文庫質(zhì)粒,用槍頭吹打混勻,或劇烈振蕩1min左右,至完全混勻。先在30℃水浴孵育30min后,轉(zhuǎn)入42℃水浴熱激25min。室溫下700g離心3min收集菌體,棄上清。加入5mL2×YPD,輕輕吹打混勻,30℃,100rpm震蕩培養(yǎng)1.5h。取20μL培養(yǎng)物梯度稀釋后涂SD-Trp-Leu-His+50mM3AT平板。30℃恒溫培養(yǎng)3天后觀察。圖3列舉了4中不同稀釋度(分別是10倍稀釋、100倍稀釋、1000倍稀釋和10000倍稀釋)后,轉(zhuǎn)化菌體涂布SD-Trp-Leu-His+50mM3AT平板生長出的轉(zhuǎn)化子,根據(jù)轉(zhuǎn)庫效率檢測平板的轉(zhuǎn)化子數(shù)量可以計算文庫的轉(zhuǎn)化效率,該文庫的轉(zhuǎn)化效率為:(320+230+1200+100)/(4*20)*5000/25μg=7*103/μgDNA(圖3)。實施例5:酵母單雜交陽性克隆鑒定將檢測的陽性克隆菌株接入SD-Trp-Leu液體培養(yǎng)基,振蕩培養(yǎng)過夜后抽提酵母質(zhì)粒。然后,酵母質(zhì)粒轉(zhuǎn)化大腸桿菌Top10新鮮感受態(tài)進(jìn)行擴增。將含有陽性克隆的Top10轉(zhuǎn)化子轉(zhuǎn)接含有Amp+的LB液體培養(yǎng)擴增后抽提質(zhì)粒,對質(zhì)粒進(jìn)行DNA測序和BLAST比對。鑒定結(jié)果得出:Dof基因(SEQIDNO.2)可以結(jié)合該串聯(lián)重復(fù)序列TR(圖4)。實施例6:Dof蛋白表達(dá)與探針標(biāo)記根據(jù)實施例5中所鑒定的Dof基因序列,在擬南芥cDNA中,利用特異性引物:上游引物5’-GGATCCATGTCTAAATCTAGAGATACGGAGAT-3’(內(nèi)含BamHI酶切位點);下游引物5’-GAGCTCTTATTGTTGCATGCTCTCCCTGAAGT-3’(內(nèi)含SacI酶切位點)克隆全長Dof基因,然后將該基因首先連接到pUC18-T(購自大連寶生物)載體上,獲得重組載體,命名為pUC-Dof,然后通過BamHI和SacI雙酶切質(zhì)粒后,獲得Dof基因片段,再連接到pET30a(購自Novagen公司)原核表達(dá)載體上,獲得重組載體,命名為pET-Dof,在大腸桿菌中進(jìn)行蛋白表達(dá)后,HPLC(高效液相色譜法)純化蛋白,備用。利用羅氏EMSA試劑盒標(biāo)記探針,溶解探針為10pmol/μL,95℃,10min,然后慢慢冷卻到室溫。用滅菌的TEN-buffer將溶解探針稀釋到3-4pmol/μL,加3.85pmol的雙鏈核苷酸,用ddH2O定容到10μL。在冰上加入5×labelingbuffer4μL;CoCl2-solution4μL;DIG-ddUTPsolution1μL;Terminaltransferase(400U)1μL,混勻,37℃放置15min。然后加入2μL0.2MEDTA(pH8.0)停止反應(yīng)。實施例7:凝膠遷移率實驗(EMSA)驗證Dof蛋白與串聯(lián)重復(fù)序列的結(jié)合提前配制非變性PAGE膠,預(yù)跑5min。在冰上加入Bindingbuffer4μL、poly[d(I-C)]1μL、polyL-lysine1μL、DIG標(biāo)記的探針(見實施例6)2μL、ddH2O12μL、非標(biāo)記的探針、Oct2Afactor1μL、Dof純化蛋白(以上的探針、非標(biāo)記的探針和蛋白可根據(jù)自己的需要而改變)?;靹?,室溫下放置15min后放到冰上,再加5μLLoadingbuffer,上樣跑非變性PAGE膠。轉(zhuǎn)膜、洗膜后放置于Detectionbuffer加底物CSPD中,室溫下放置5min后再置于37℃10min。最后用X射線膠片曝光30min,用顯影液漂洗5min,再用定影液漂洗5min,結(jié)果如圖5,由圖得知:該Dof蛋白可以結(jié)合串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5。SEQUENCELISTING<110>江蘇大學(xué)<120>一種結(jié)合串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5的Dof蛋白質(zhì)<130>一種結(jié)合串聯(lián)重復(fù)序列(TTTACAC)5的Dof蛋白質(zhì)<160>2<170>PatentInversion3.3<210>1<211>399<212>PRT<213>擬南芥(Arabidopsisthaliana,Columbiaecotype)<400>1MetSerLysSerArgAspThrGluIleLysLeuPheGlyArgThrIle151015ThrSerLeuLeuAspValAsnCysTyrAspProSerSerLeuSerPro202530ValHisAspValSerSerAspProSerLysGluAspSerSerSerSer354045SerSerSerCysSerProThrIleGlyProIleArgValProValLys505560LysSerGluGlnGluSerAsnLysPheLysAspProTyrIleLeuSer65707580AspLeuAsnGluProProLysAlaValSerGluIleSerSerProArg859095SerSerLysAsnAsnCysAspGlnGlnSerGluIleThrThrThrThr100105110ThrThrSerThrThrSerGlyGluLysSerThrAlaLeuLysLysPro115120125AspLysLeuIleProCysProArgCysGluSerAlaAsnThrLysPhe130135140CysTyrTyrAsnAsnTyrAsnValAsnGlnProArgTyrPheCysArg145150155160AsnCysGlnArgTyrTrpThrAlaGlyGlySerMetArgAsnValPro165170175ValGlySerGlyArgArgLysAsnLysGlyTrpProSerSerAsnHis180185190TyrLeuGlnValThrSerGluAspCysAspAsnAsnAsnSerGlyThr195200205IleLeuSerPheGlySerSerGluSerSerValThrGluThrGlyLys210215220HisGlnSerGlyAspThrAlaLysIleSerAlaAspSerValSerGln225230235240GluAsnLysSerTyrGlnGlyPheLeuProProGlnValMetLeuPro245250255AsnAsnSerSerProTrpProTyrGlnTrpSerProThrGlyProAsn260265270AlaSerPheTyrProValProPheTyrTrpGlyCysThrValProIle275280285TyrProThrSerGluThrSerSerCysLeuGlyLysArgSerArgAsp290295300GlnThrGluGlyArgIleAsnAspThrAsnThrThrIleThrThrThr305310315320ArgAlaArgLeuValSerGluSerLeuArgMetAsnIleGluAlaSer325330335LysSerAlaValTrpSerLysLeuProThrLysProGluLysLysThr340345350GlnGlyPheSerLeuPheAsnGlyPheAspThrLysGlyAsnSerAsn355360365ArgSerSerLeuValSerGluThrSerHisSerLeuGlnAlaAsnPro370375380AlaAlaMetSerArgAlaMetAsnPheArgGluSerMetGlnGln385390395<210>2<211>1200<212>DNA<213>擬南芥(Arabidopsisthaliana,Columbiaecotype)<400>2atgtctaaatctagagatacggagataaagttgtttgggaggacaatcacatctctttta60gatgtgaattgttatgatccgtcgtcgttgtcccctgttcacgatgtttcttctgatcca120agcaaggaggattcgtcttcttcttcatcttcttgttctccaactattggaccaatcagg180gttccggttaaaaaaagtgagcaagagagtaacaaattcaaagatccatatatattatcc240gatctaaacgaaccaccaaaagcagtatctgagatttcatcaccaagaagttccaagaac300aactgtgatcaacagagcgagatcacaacaacaactaccacaagtactacatcaggagag360aaatcaacggctctcaagaaaccggacaagcttattccatgtcctagatgtgaaagcgca420aacaccaaattctgttattacaacaactacaacgtgaaccagccacgttacttctgcagg480aactgtcagaggtattggacagctggtggatctatgaggaacgttcctgttggctcaggt540cgtcgcaagaacaaaggatggccttcttcaaaccattacttgcaagtcacttctgaggat600tgtgataataataactcggggacgatccttagtttcggttcttcggagtcttcggttaca660gagactggtaagcatcagtcaggtgatacagcaaagataagtgctgattcagtttctcaa720gaaaataaaagctaccaagggtttcttcctccgcaagtaatgttacctaataattcttct780ccttggccttaccaatggagtccaacgggtcctaacgctagtttctaccctgtccccttc840tactggggatgcacggttccgatataccctacctcagagacttcatcatgtttaggaaaa900cggtcaagagatcaaactgaaggaagaatcaatgatactaatacaacaataactactaca960agagcaagattggtctcagaatctcttagaatgaatatcgaagctagtaagagcgctgtg1020tggtctaagttaccgacaaaacccgagaaaaaaacgcaaggattcagtttgttcaatgga1080tttgacacaaagggaaacagcaacagaagtagcttggtctccgaaacttctcacagtcta1140caagcaaaccctgcagcgatgtctagagctatgaacttcagggagagcatgcaacaataa1200
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