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豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒2型多重實時熒光pcr檢測引物及方法

文檔序號:575225閱讀:231來源:國知局
專利名稱:豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒2型多重實時熒光pcr檢測引物及方法
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明涉及一種實時熒光PCR檢測方法,具體涉及豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與 豬圓環(huán)病毒2型多重STOR Green I實時熒光PCR檢測引物及方法。
背景技術(shù)
豬偽狂犬病病毒(PRV)、豬細(xì)小病毒(PPV)、豬圓環(huán)病毒2型(PCW)都能夠不同程 度的導(dǎo)致妊娠母豬的繁殖障礙,引起母豬流產(chǎn)、胚胎死亡、胎兒畸形、胎兒木乃伊化及不孕 等,在豬群中具傳播快、胚胎致死率高、流行范圍廣、傳播途徑多、病原體頑固等特點,每年 給養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大損失。而且經(jīng)?;旌细腥?,靠中和試驗和分離病毒來確診容易造成假 陰性,而且操作繁瑣,所需時間長,尋求一種操作簡單、快速的檢測、鑒別診斷方法是防制這 類疾病的基礎(chǔ)。目前,針對以上三種病毒病的診斷方法有很多,這些方法具有操作復(fù)雜、費時費 力、敏感度差及陰性率高等缺點;臨床已經(jīng)使用的PCR診斷技術(shù),雖然有靈敏度高、特異性 強(qiáng)、快速、簡便等優(yōu)點,但不能準(zhǔn)確定量;基于TaqMan技術(shù)熒光定量PCR方法能定量,但是 成本較高,且需要合成特異性探針。亟需研究和開發(fā)簡便、快速、特異、成本低、定量的檢測 方法。STOR Green I是非特異性結(jié)合于雙鏈DNA的熒光染料,可以和多種擴(kuò)增序列結(jié)合。 SYBRGreen I實時熒光PCR檢測方法可以不用設(shè)計和合成特異的熒光標(biāo)記的探針直接擴(kuò)增 檢測任何基因的技術(shù)。

發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明要解決的技術(shù)問題設(shè)計與合成出豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒 2型引物后,利用引物用STOR Green I實時熒光PCR檢測方法同時檢測出豬偽狂犬病毒、豬 細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒2型三種病毒。本發(fā)明的技術(shù)方案是豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒2型多重STOR Green I實時熒光PCR檢測引物的序列如下豬圓環(huán)病毒2型引物的序列如下上游引物Pl 5' -TAA CTA CTC CTC CCG CCA TAC-3‘;下游引物P2 5' -GCC TAC GTG GTC TAC ATT TCC-3‘;豬細(xì)小病毒引物的序列如下上游引物P3 5' -TGG GAG GGC TTG GTT AGA-3‘;下游引物P4:5' -TGG TGG TGA GGT TGC TGA T-3';豬偽狂犬病毒引物的序列如下上游引物Ρ5 5' -CGT GGA ACG AGC CCT TCA G-3';下游引物P6 5' -AGA GCG GGT TGG CGA TGT-3‘。利用上述引物檢測豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒2型的多重SYBRGreen I實時熒光PCR檢測方法,包括提取樣品的DNA后,按如下STOR Green I實時熒光 PCR反應(yīng)體系和STOR Green I實時熒光PCR擴(kuò)增程序?qū)悠愤M(jìn)行檢測。所述STOR Green I實時熒光PCR反應(yīng)體系,在25 μ 1體系中加入以下成份SYBR Green I PreMix 17 μ 1所述SYBR Green I實時熒光PCR擴(kuò)增程序為95°C預(yù)變性5min ;進(jìn)入循環(huán),95°C 變性15s,55°C退火20s,72°C延伸20s,40個循環(huán);反應(yīng)結(jié)束后先加熱至95°C,然后再降至 65°C,開始以0. 5°C /s遞增至95°C檢測熒光信號得出擴(kuò)增產(chǎn)物的溶解曲線。本發(fā)明的有益效果是能夠同時有效診斷和檢測出PPV、PRV和PCV2三種病毒。能 最少檢測出189拷貝豬偽狂犬病毒質(zhì)粒、203拷貝豬細(xì)小病毒質(zhì)粒和173拷貝豬圓環(huán)病毒 2型質(zhì)粒,不能檢測出非特異的豬瘟病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒和豬流感病毒,有利于 妊娠母豬繁殖障礙性病毒的鑒別與診斷,并且具有的較好敏感性、重復(fù)性和穩(wěn)定性,為PRV、 PPV.PCV2的檢測提供了一種新的方法,可作為規(guī)?;i場PRV、PPV、PCV2的凈化檢測方法, 建立無PRV、PPV、PCV2的豬群,同時也為PRV、PPV、PCV2感染的分子流行病學(xué)調(diào)查,研究PRV、 PPV、PCV2分子發(fā)病機(jī)制,早期診斷,診斷試劑盒的研制與開發(fā),藥物或疫苗的免疫機(jī)制提供 了試驗依據(jù)和技術(shù)手段。


圖1為PRV gH基因質(zhì)粒的PCR鑒定結(jié)果;圖2為PPV VP2部分基因質(zhì)粒的PCR鑒定結(jié)果;圖3為PCV20RF2部分基因質(zhì)粒的PCR鑒定結(jié)果;其中,圖1,圖2,圖3中1.目的片段M. DL 2000Marker圖4為多重STOR Green I熒光定量PCR反應(yīng)溶解曲線;圖5為多重STOR Green I實時熒光PCR反應(yīng)特異性試驗溶解曲線;圖6為多重STORGreen I實時熒光PCR反應(yīng)同一濃度重復(fù)性試驗溶解曲線;圖7為多重STOR Green I實時熒光PCR反應(yīng)不同濃度重復(fù)性試驗溶解曲線。
具體實施例方式實施例豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒2型多重STOR Green I實時熒光PCR檢 測引物的序列如下豬圓環(huán)病毒2型引物的序列如下上游引物Pl 5' -TAA CTA CTC CTC CCG CCA TAC-3';下游引物P2 5' -GCC TAC GTG GTC TAC ATT TCC-3‘;PlP5P2 P6DNAddH20_
0. 5+0. 5+0. 5 μ 1 0. 5+0. 5+0. 5 μ 1 1 + 1 + 1 μ 1 2μ 1
豬細(xì)小病毒引物的序列如下上游引物P3 5' -TGG GAG GGC TTG GTT AGA-3‘;下游引物P4:5' -TGG TGG TGA GGT TGC TGA T-3';豬偽狂犬病毒引物的序列如下上游引物Ρ5 5' -CGT GGA ACG AGC CCT TCA G-3';下游引物P6 5' -AGA GCG GGT TGG CGA TGT-3‘。利用上述引物檢測豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒2型的多重STOR GreenI實時熒光PCR檢測方法,包括提取樣品的DNA后,按如下STOR Green I實時熒光 PCR反應(yīng)體系和STOR Green I實時熒光PCR擴(kuò)增程序?qū)悠愤M(jìn)行檢測。
所述STOR Green I實時熒光PCR反應(yīng)體系,在25 μ 1體系中加入以下成份
SYBR Green I PreMix 17 μ 1
Ρ1/Ρ3/Ρ50. 5+0. 5+0. 5 μ 1
Ρ2/Ρ4/Ρ60. 5+0. 5+0. 5 μ 1
DNA1+1+1 μ 1
(MH2O2 μ 1_25 μ 1所述SYBR Green I實時熒光PCR擴(kuò)增程序為95°C預(yù)變性5min ;進(jìn)入循環(huán),95°C 變性15s,55°C退火20s,72°C延伸20s,40個循環(huán);反應(yīng)結(jié)束后先加熱至95°C,然后再降至 65°C,開始以0. 5°C /s遞增至95°C檢測熒光信號得出擴(kuò)增產(chǎn)物的溶解曲線。上述實施例中,關(guān)于材料和方法如下1材料與方法1. 1 材料1. 1. 1毒株、細(xì)胞株和菌株P(guān)K-15細(xì)胞,豬偽狂犬病毒標(biāo)準(zhǔn)毒株均購自中國獸藥監(jiān)察所;豬細(xì)小病毒,豬圓環(huán) 病毒2型,豬繁殖與呼吸綜合征病毒,豬瘟病毒和豬流感病毒標(biāo)準(zhǔn)毒株均購自河南省動物 性食品安全重點實驗室;工程菌DH5ci感受態(tài)細(xì)胞購自大連寶生物工程有限公司。1. 1. 2常用溶液及培養(yǎng)基LB液體培養(yǎng)基;氨芐青霉素(Ampicillin,Amp)貯存液,100mg/ml ;IPTG濃度為 100mg/ml ;X-gal濃度為20mg/ml,保存于棕色瓶內(nèi)或用鋁箔包裹的瓶內(nèi),以上溶液均貯存 于-20°C備用。1. 1. 3主要儀器及試劑紫外凝膠成像系統(tǒng)購自美國ALPHA INNOTECH公司;Rotor-Gene 3000型實時定量 PCR擴(kuò)增儀購自澳大利亞基因公司、PTC-200型PCR儀購自美國MJ公司、3K30型高速冷凍 離心機(jī)購自德國SIGMA公司等。SYBR Green I PreMix ;EX TaqDNA聚合酶、DNA marker DL2000購自大連寶生物工 程有限公司;Protein K購自華美生物工程公司;DMEM培養(yǎng)基購自GIBC0BRL公司;胎牛血 清購自Hyclone公司;胰蛋白酶購自LTI公司;T4DNA連接酶、PGEM-T Easy質(zhì)粒載體均購 自!Iomega公司;DNA凝膠回收試劑盒購自杭州維特潔生物技術(shù)有限公司;質(zhì)粒提取試劑盒購自北京博大泰克生物公司。1. 2 方法1. 2. 1PCV2的培養(yǎng)增殖將PCV2同步接種于未貼壁的冊-15細(xì)胞,接毒量為培養(yǎng)液的1/10,將細(xì)胞置于 37V,5% CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)7 后,終止培養(yǎng)并收毒。反復(fù)凍融2 3次,收集病毒液, 直接進(jìn)行病毒RNA的提取或-80°C貯存?zhèn)溆谩?. 2. 2PPV的培養(yǎng)增殖將處于對數(shù)生長期的PK-15細(xì)胞用0. 25%的胰酶消化后,放入37°C,5% CO2的培 養(yǎng)箱中培養(yǎng)。待細(xì)胞貼壁長至生長表面的60% 70%時,取出培養(yǎng)瓶用PBS液洗2 3次 后,按培養(yǎng)液1/10體積的接種量接種PPV病毒,然后將細(xì)胞置于37°C,5% CO2的培養(yǎng)箱中 培養(yǎng)。每天在倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞病變,培養(yǎng)7 后收毒。將收集的病毒液反復(fù)凍融3 次,直接進(jìn)行病毒DNA的提取或_70°C貯存?zhèn)溆谩?. 2. 3PRV的培養(yǎng)增殖當(dāng)H(-15細(xì)胞達(dá)90%以上時,接種100TCID5(1PRV,37°C吸附lh,洗去未吸附病毒,加 入適量的細(xì)胞維持液,待細(xì)胞病變達(dá)到70%時,終止培養(yǎng),反復(fù)凍融2 3次,收集病毒液, 直接進(jìn)行病毒DNA的提取或_80°C貯存?zhèn)溆谩?.2. 4引物設(shè)計與合成以GenBank公布豬圓環(huán)病毒2型0RF2基因為參照序列(AF027217),豬細(xì)小病毒 NADL-2株(NC001718)VP2基因序列,Klupp等報道的豬偽狂犬病毒gH基因序列,用I^rimer Premier5. 0生物軟件分別設(shè)計出1對特異性引物,預(yù)計擴(kuò)增片段分別為171bp、313bp和 35^p,引物的序列如下豬圓環(huán)病毒2型引物的序列如下上游引物Pl 5' -TAA CTA CTC CTC CCG CCA TAC-3‘;下游引物P2 5' -GCC TAC GTG GTC TAC ATT TCC-3‘;豬細(xì)小病毒引物的序列如下上游引物P3 5' -TGG GAG GGC TTG GTT AGA-3';下游引物P4:5' -TGG TGG TGA GGT TGC TGA T-3';豬偽狂犬病毒引物的序列如下上游引物Ρ5 5' -CGT GGA ACG AGC CCT TCA G-3';下游引物P6 5' -AGA GCG GGT TGG CGA TGT-3‘。上述引物均由上海生工生物工程有限公司合成。1. 2. 5PCV2、PPV、PRV 病毒 DNA 的提取傳統(tǒng)的蛋白酶K提取方法取增殖的病毒液各450μ 1,加入等體積樣品裂解緩沖 液
,混勻,再加入蛋白酶 K (終 濃度為200 μ g/m L),56°C水浴lh,然后加入等體積的平衡酚,混勻,IOOOOrpm離心5min。 取上清,經(jīng)酚氯仿異戊醇05 24 1)再次抽提后用2倍體積的異丙醇沉淀,-200C 放置30min,12000rpm離心lOmin,70 %乙醇洗滌2次,干燥,加入25 μ 1超純水溶解,貯存 于-20°C備用。1. 2. 6豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬瘟病毒、豬流感病毒cDNA的制備
分別取400 u l的病毒液,加入400 u l Trizol,劇烈振蕩;加入100 u l氯仿異戊醇(241)劇烈振蕩30s,混勻;放入臺式離心機(jī)12000rpm,室溫離心5min;取上層水相,小心轉(zhuǎn)移至經(jīng)DEPC水處理過的1.5ml無菌離心管中,加入150 u l無水乙醇,混勻;將上步中的溶液全部轉(zhuǎn)移到UnLQ一10柱子中,室溫放置2min,使溶液中的RNA盡可能的與柱子的濾膜相結(jié)合,8000rpm,離心lmin;取出柱子棄去收集管中的廢液,將柱子放入收集管中并加入450 u 1RPE Solution,室溫靜置2min,10000rpm,離心30s,并重復(fù)一次;取出柱子,棄去廢液,12000rpm,空離3min;取出柱子,放入經(jīng)DEPC水處理過的1.5ml無菌離心管中,于柱內(nèi)膜中央加入16 u l DEPC水,55—80℃放置2min;10000rpm,離心lmin,收集管內(nèi)溶液,其中含有所抽提的三種病毒的RNA,可立即使用或一70℃貯存?zhèn)溆谩?br> 在提取的三種病毒的RNA中分別加入反轉(zhuǎn)錄隨機(jī)引物(10pmol/u 1),4 u ldNTP(2.5mmol/L),70℃放置5min,冰浴2min;加入4 u l反轉(zhuǎn)錄Buffer,2 u l 0.1M DTT,l u l Rnaseinfnibitor(40u/IX 1),42℃放置2min;加入l u 1M—MLV反轉(zhuǎn)錄酶(200u/u 1),42℃作用lh,70℃放置15min,滅活反轉(zhuǎn)錄酶。將反轉(zhuǎn)錄后的cDNA于一20℃貯存?zhèn)溆谩?br> 1.2.7質(zhì)粒模板標(biāo)準(zhǔn)品的制備
以提取的PCV2DNA、PRV DNA和PPV DNA為模板,用優(yōu)化的條件擴(kuò)增ORF2基因片段、州基因片段和NSl基因片段。在50 u l反應(yīng)體系中分別依次加入lo×PCR緩沖液5 u l,MgCl,3mmol/L,dNTPs濃度為200 u m/L,Taq酶1U,引物濃度P1/Pa/P5、P2/P4/P6為0.5 u l,模板5 u l,最后用雙蒸水補(bǔ)至50 u l,將EP管置PCR儀,按如下程序進(jìn)行擴(kuò)增95℃預(yù)變性5min后,進(jìn)入循環(huán)95℃30s,55℃30s,72℃40s,30個循環(huán)后,72℃延伸10min,4℃結(jié)束反應(yīng)。2.5%瓊脂糖凝膠電泳。
將擴(kuò)增出目的片段按膠回收試劑盒回收,按照載體連接試劑盒將目的片段與pGEM—TEasy載體相連接,轉(zhuǎn)化DH5a感受態(tài)細(xì)胞,挑選陽性菌落,進(jìn)行菌液PCR鑒定后,用質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒DNA,送大連寶生物工程有限公司進(jìn)行測序。經(jīng)測序驗證的陽性質(zhì)粒作為模板標(biāo)準(zhǔn)品,并分別命名為pGEM—VP2、pGEM—gH和pGEM—PCV2。
1.2.8PPV、PRV、PCV2多重SYBR Green工實時熒光PCR反應(yīng)體系條件的優(yōu)化
SYBR Green工實時熒光PCR反應(yīng)體系如下
在25 u l體系中加入以下成份
SYBR Green工PreMix15 u l
P1/Pa/P50.5+0.5+0.5 ix l
P2/P4/P60.5+0.5+0.5 ix l
DNA1+1+1 IX l
ddH。04 IX l[Oloo]
0]]25 u l
瞬時離心后,將EP管置于熒光定量PCR儀上95℃預(yù)變性5min;進(jìn)入循環(huán),95℃變性15s,55℃退火20s,72℃延伸20s,40個循環(huán);反應(yīng)結(jié)束后先加熱至95℃,然后再降至65℃,開始以0.5℃/s遞增至95℃檢測熒光信號得出擴(kuò)增產(chǎn)物的溶解曲線。同時設(shè)立無模板的陰性對照。本發(fā)明反應(yīng)條件的優(yōu)化是在3種病毒質(zhì)粒模板等量的條件下進(jìn)行的。
1.2.8.1引物濃度的優(yōu)化
分別以50pmol/y 1 的引物濃度 0. 2 μ 1、0· 3μ 1、0· 4μ 1、0· 5μ 1、0· 6μ 1、0· 7μ 1、 0.8μ 1、0.9μ 1進(jìn)行STOR Green I實時熒光PCR反應(yīng),以選取擴(kuò)增該病毒的最佳引物濃度。 添加時取相等體積的引物量。1.2.8. 2退火溫度的優(yōu)化多重SYBR Green I 實時熒光 PCR 分別以 52°C、53°C、54°C、55°C、56°C、57°C、58°C 的退火溫度進(jìn)行反應(yīng),以確定最佳的退火溫度。1. 2. 8. 3SYBR PreMix 濃度的優(yōu)化本發(fā)明中熒光染料預(yù)混酶STOR Green I PreMix的濃度是5υ/μ 1,固定STOR Green I實時熒光PCR反應(yīng)體系的總體積,通過改變熒光染料預(yù)混酶STOR PreMix的添加量 來篩選STOR Green I熒光定量PCR反應(yīng)體系中STOR PreMix的最佳濃度。分別以10 μ 1、 12μ 1、15μ 1、17μ 1、20μ 1、22μ 1 的濃度進(jìn)行篩選。1.2. 9特異性檢驗按照STOR Green I熒光定量反應(yīng)體系,分別加入PCV2、PPV、PRV細(xì)胞毒DNA 1 μ 1 (約20ng),豬繁殖與呼吸綜合征病毒細(xì)胞毒cDNA 1 μ 1 (約20ng),豬流感病毒細(xì)胞毒 cDNA 1 μ 1 (約20ng),豬瘟病毒細(xì)胞毒cDNA 1 μ 1 (約20ng),同時設(shè)陰性對照,驗證其特異性。1.2. 10重復(fù)性檢驗選取PCV2、PPV、PRV同一濃度的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行多重SYBR Green I實時熒光PCR 反應(yīng)重復(fù)性試驗,反應(yīng)重復(fù)3次;將不同濃度的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行多重STOR Green I實時 熒光PCR反應(yīng)重復(fù)性試驗,反應(yīng)重復(fù)3次;通過每種病毒的Tm值和溶解曲線的分析,驗證 PCV2、PPV、PRV多重STOR Green I實時熒光PCR方法的穩(wěn)定性。1.2. 11實時熒光PCR敏感性測定分別將PCV2、PPV、PRV的重組質(zhì)粒測OD26tl值,計算出每微升的拷貝數(shù),然后進(jìn)行 10倍梯度稀釋,以此作為模板進(jìn)行多重STOR Green I實時熒光PCR反應(yīng),進(jìn)而確定多重 SYBRGreen I實時熒光PCR反應(yīng)檢測每種病毒的敏感性。1. 2. 12疑似PCV2、PPV、PRV病料樣品檢測及與常規(guī)PCR檢測方法的比較取采自河南省鄭州、洛陽、南陽地市豬場的疑似PCV2、PPV、PRV感染的病料進(jìn)行多 重STOR Green I實時熒光PCR和檢測,以證實該方法的實用性。2 結(jié)果2.1質(zhì)粒PCR擴(kuò)增如圖1,圖2,圖3的PRV gH基因、PPV VP2、PCV20RF2部分基因質(zhì)粒PCR鑒定結(jié)果所 示,分別擴(kuò)增出了與預(yù)計大小相一致的171bp、355bp和31!3bp的片段。pGEM-PCV、pGEM_PRV 和pGEM-PPV經(jīng)EcoR I酶切鑒定,得到產(chǎn)物與預(yù)期的條帶一致。測序與國內(nèi)流行的毒株相 比,核苷酸同源性在99. 6%,99. 8%,99. 7%以上。測得提取的PPV、PCV2、PRV質(zhì)粒DNA濃度分別為pGEM_VP2質(zhì)量濃度=141 μ g/ ml, pGEM-PCV2 質(zhì)量濃度=77. 5 μ g/ml, pGEM-gH 質(zhì)量濃度=145 μ g/ml。經(jīng)計算, PPVpGEM-VP2 質(zhì)粒濃度為 7. 86X IO13 拷貝 /ml,pGEM-PCV 質(zhì)粒濃度為 4. 53X IO13 拷貝 /ml, pGEM-gH質(zhì)粒濃度為8. 00X IO13拷貝/ml。2. 2PPV、PRV、PCV2多重STOR Green I實時熒光PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化結(jié)果[O122] SYBR Green工雖然是一種無特異性的熒光染料,但在進(jìn)行多重PCR試驗時,它并非均一的和所有的目的片段結(jié)合,而是會和某些片段優(yōu)先結(jié)合,這就需要對反應(yīng)體系進(jìn)行條件優(yōu)化,保證體系中有足夠的染料和各種引物的比例適中。[O123] 2.2.1引物濃度優(yōu)化結(jié)果
PCV21PPV1PRY引物均采用50pmoL/u 10.5 u l的量在25 u l體系中進(jìn)行反應(yīng),能夠產(chǎn)生特異性的單一峰值,陰性對照無特異性峰值產(chǎn)生。PCV21PPV1PRY多重SYBR Green工實時熒光PCR反應(yīng)的最佳引物濃度均為0.5 u l。[O125] 2.2.2退火溫度優(yōu)化結(jié)果
PPV1PRY1PCV2在退火溫度55℃時,均產(chǎn)生了特異性的峰值。PCV2/m值分別為81.5℃,81.5℃,81.3℃;PRY/m值分別為87.7℃,87.7℃,87.2℃;PPV/m值分別為74.2℃,74.6℃,74.9℃。陰性對照均無特異性峰值產(chǎn)生。PPV1PRY1PCV2多重SYBR Green工實時熒光PCR反應(yīng)的最佳退火溫度為55℃。[O127] 2.2.3SYBR Green工PreMix濃度的優(yōu)化結(jié)果[O128] PPV1PRY1PCV2多重SYBR Green工實時熒光PCR反應(yīng)中SYBR Green工PreMix添加量在17 u l時,三者均可產(chǎn)生特異性的峰值,陰性對照無特異性峰值產(chǎn)生。
2.3多重SYBR Green工實時熒光PCR反應(yīng)體系的確定[O130] 通過各個反應(yīng)條件的優(yōu)化,最終確定了PPV1PRY1PCV2多重SYBR Green工實時熒光PCR反應(yīng)體系,在25 u l體系中加入以下成份
3]] SYBR Green工PreMix17 u l
P1/P3/P50.5+0.5+0.5 u l
P2/P4/P60.5+0.5+0.5 u l[O134] DNA1+1+1 u l[O135] ddH。02 u l[O136]................................................................................................................一一[O137]25 u l
該反應(yīng)的循環(huán)參數(shù)最終確定為95℃預(yù)變性5min;進(jìn)入循環(huán),95℃變性15s,55℃退火20s,72℃延伸20s,40個循環(huán);反應(yīng)結(jié)束后先加熱至95℃,然后再降至65℃,開始以0.5℃/s遞增至95℃檢測熒光信號得出擴(kuò)增產(chǎn)物的溶解曲線。[O139] 2.4PCV21PPV1PRY多重SYBR Green工實時熒光PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的溶解曲線及PCV21PPV1PRY Tm值的確定
本發(fā)明利用Tm值的不同進(jìn)行核酸片段的區(qū)分,核酸片段的Tm值主要與GC含量1序列長度和序列結(jié)構(gòu)有關(guān)。PRY的擴(kuò)增片段基因序列長355bp,GC含量比一般病毒高,其Tm值最高,達(dá)到了87℃以上,很容易與其他病毒區(qū)分;PCV2擴(kuò)增片段長17lbp,Tm值比PRY的低,在82℃左右;PPV的擴(kuò)增片段為313bp,GC含量相對最低,Tm值比PRY1PCV2的Tm值都低,況且PRY1PPV和PCV2三者擴(kuò)增產(chǎn)物的長度也不同,所以PRY1PPV1PCV2的Tm值可以很好的區(qū)分。
按照PCV21PPV1PRY多重SYBR Green工實時熒光PCR反應(yīng)條件,以PCV21PPV1PRY的重組質(zhì)粒為模板,進(jìn)行PCR反應(yīng),經(jīng)軟件Rotor—gen6.0分析后得到溶解曲線如圖4所示,從圖中可以看出三個特異性的峰值所對應(yīng)的溫度即為PRY擴(kuò)增片段的Tm值1PPV擴(kuò)增片段的Tm值和PCV2擴(kuò)增片段的Tm值,但是它們并不是固定不變的,它們的Tm值會在一定的溫 度范圍內(nèi)變動,通過多個批次試驗數(shù)據(jù)的收集整理后,最終確定了 PCV2、PPV、PRV 3種病毒 的 Tm 值,分別為:PCV280 81. 2°C,PRV 86 87. 5°C,PPV 73. 5 75. 2°C。陰性對照則 無峰值產(chǎn)生。三種病毒的Tm值相差較大,因此,可以利用三者擴(kuò)增產(chǎn)物片段Tm值的不同及 溶解曲線的3個特異性的峰進(jìn)行診斷與鑒別區(qū)分。2. 5多重STOR Green I實時熒光PCR特異性檢驗結(jié)果從PCV2、PPV、PRV多重STOR Green I實時熒光PCR特異性試驗結(jié)果如圖5所示, 從圖中可以看出,對照組中豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬瘟病毒、豬流感病毒及陰性對照均 無特異性峰值產(chǎn)生。只有試驗組中的PCV2、PPV、PRV多重實時熒光PCR產(chǎn)生了特異性的三 個峰值。PCV2 Tm 值為 80. 5 °C,PPV Tm 值為 74. 5 °C,PRV Tm 值為 87. 5 °C。2. 6多重STOR Green I實時熒光PCR重復(fù)性試驗結(jié)果2. 6. 1同一濃度的PCV2、PPV、PRV多重SYBR Green I實時熒光PCR重復(fù)性試驗結(jié)
果3次重復(fù)性試驗中,各個病毒的Tm值都較為穩(wěn)定。如表1,圖6所示,對照組中豬 繁殖與呼吸綜合征病毒、豬瘟病毒、豬流感病毒及陰性對照均無特異性峰值產(chǎn)生。同濃度 的PCV2、PPV、PRV多重STOR Green I實時熒光PCR反應(yīng)具有很好的穩(wěn)定性。表1多重STOR Green I實時熒光PCR的同一濃度重復(fù)性試驗分析
權(quán)利要求
1.豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒2型多重STORGreen I實時熒光PCR檢測 引物,其特征在于豬圓環(huán)病毒2型引物的序列如下 上游引物 Pl 5' -TAA CTA CTC CTC CCG CCA TAC-3‘; 下游引物 P2 5' -GCC TAC GTG GTC TAC ATT TCC-3‘; 豬細(xì)小病毒引物的序列如下 上游引物 P3 5' -TGG GAG GGC TTG GTT AGA-3‘; 下游引物 P4:5' -TGG TGG TGA GGT TGC TGA T-3'; 豬偽狂犬病毒引物的序列如下 上游引物 Ρ5 5' -CGT GGA ACG AGC CCT TCA G-3'; 下游引物 Ρ6 5' -AGA GCG GGT TGG CGA TGT-3‘。
2.利用權(quán)利要求1所述引物檢測豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒2型的多重 SYBR Green I實時熒光PCR檢測方法,包括提取樣品的DNA后,按如下STOR Green I實時 熒光PCR反應(yīng)體系和STOR Green I實時熒光PCR擴(kuò)增程序?qū)悠愤M(jìn)行檢測,其特征在于所述STOR Green I實時熒光PCR反應(yīng)體系,在25 μ 1體系中加入以下成份SYBR Green I PreMix 17 μ 1Ρ1/Ρ3/Ρ50. 5+0. 5+0. 5 μ 1Ρ2/Ρ4/Ρ60. 5+0. 5+0. 5 μ 1DNA1+1+1 μ 1ddH2O2 μ 1 .25 μ 1所述STOR Green I實時熒光PCR擴(kuò)增程序為95°C預(yù)變性5min ;進(jìn)入循環(huán),95°C變性 15s, 55°C退火20s,72°C延伸20s,40個循環(huán);反應(yīng)結(jié)束后先加熱至95°C,然后再降至65°C, 開始以0. 5°C /s遞增至95°C檢測熒光信號得出擴(kuò)增產(chǎn)物的溶解曲線。
全文摘要
本發(fā)明公開了一種豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒2型多重SYBR Green I實時熒光PCR檢測引物及方法,設(shè)計合成出引物,利用引物檢測豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒2型的多重SYBR Green I實時熒光PCR檢測方法,包括提取樣品的DNA后,利用SYBR Green I實時熒光PCR反應(yīng)體系和SYBR Green I實時熒光PCR擴(kuò)增程序?qū)悠愤M(jìn)行檢測。本發(fā)明的有益效果是能夠同時有效診斷和檢測出豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒與豬圓環(huán)病毒2型三種病毒,不能檢測出非特異的豬瘟病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒和豬流感病毒,有利于妊娠母豬繁殖障礙性病毒的鑒別與診斷,并且具有的較好敏感性、重復(fù)性和穩(wěn)定性。
文檔編號C12R1/93GK102071259SQ200910172719
公開日2011年5月25日 申請日期2009年11月25日 優(yōu)先權(quán)日2009年11月25日
發(fā)明者黨玉麗, 崔保安, 李明鳳, 胡慧, 郭顯坡, 陳紅英, 魏戰(zhàn)勇 申請人:河南農(nóng)業(yè)大學(xué)
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