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林蔭銀蓮花的離體快速增殖方法及應用的制作方法

文檔序號:350768閱讀:213來源:國知局
專利名稱:林蔭銀蓮花的離體快速增殖方法及應用的制作方法
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明屬于植物組織培養(yǎng)技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及一種林蔭銀蓮花的離體快速增殖培養(yǎng)方法及應用。

背景技術(shù)
林蔭銀蓮花(Anemone flaccida Fr.Schmidt)系毛茛科(Ranunculacease)銀蓮花屬(Anemone)多年生草本植物,其干燥根莖俗稱“地烏”,具有祛風濕、助筋骨、消腫止痛等功效,是一種珍稀的高山藥材。每年3~5月為林蔭銀蓮花地上部生長發(fā)育時期?;~1~2片,長葉柄,五角形,長2~7cm,寬3~10cm。根狀莖近圓柱形,最大直徑為1cm,3~5年方能采收入藥。野生資源主要分布于長江中下游各省海拔1500~3000m的山坡林下陰濕處,在中國湖北省的鄂西山地分布相對集中[1]。
目前,五類新藥“地烏風濕安膠囊”對類風濕性關(guān)節(jié)炎有良好的治療作用,且毒副作用很小,已進入三期臨床試驗,該成藥將具有廣闊的市場前景[2]。林蔭銀蓮花野生資源珍稀,自然條件下生長、繁殖緩慢,嚴重限制了地烏成藥的開發(fā)利用。因此,利用快速增殖離體林蔭銀蓮花的培養(yǎng)方法對其進行快繁就成為解決這一矛盾的關(guān)鍵。
截至目前,國內(nèi)外除本課題組的工作外,關(guān)于林蔭銀蓮花的組織培養(yǎng)技術(shù),均尚未見報導。自2006年以來,本課題組對林蔭銀蓮花的快繁技術(shù)從實驗室組培到組培苗原產(chǎn)地的煉苗、栽培進行了系統(tǒng)研究與開發(fā),以地烏根狀莖芽為外植體誘導不定芽,再對不定芽生根培養(yǎng)后得到林蔭銀蓮花無菌組培苗已獲得成功[3]??偨Y(jié)前期工作后發(fā)現(xiàn),要實現(xiàn)離體培養(yǎng)條件下快速繁殖林蔭銀蓮花完整植株,使其能夠?qū)崿F(xiàn)人工栽培的目的尚存在以下一些問題需要解決(1)培養(yǎng)基的各種成分針對性不強,增殖效率較低;(2)缺乏關(guān)于試管苗繁殖系數(shù)和生長狀況等生物學性狀的詳細實驗數(shù)據(jù);(3)試管苗生根率雖較高,但其再生根很細且弱,根系質(zhì)量差,影響對營養(yǎng)物質(zhì)的吸收,特別是緩苗期較長,移栽成活率低;(4)現(xiàn)有技術(shù)未見有對再生林蔭銀蓮花試管苗的煉苗及實地移栽的報道,更未見到關(guān)于利用離體培養(yǎng)林蔭銀蓮花用于生產(chǎn)應用的實際結(jié)果。


發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明的目的在于克服現(xiàn)有技術(shù)的缺陷,提供一種林蔭銀蓮花的離體快速增殖方法及應用,以提高離體條件下林蔭銀蓮花再生植株的生根頻率,提高根的質(zhì)量,進而提高林蔭銀蓮花的繁殖效率。
本發(fā)明通過以下技術(shù)方案實現(xiàn) 1、一種林蔭銀蓮花的離體快速增殖方法,其步驟如下所述 A、不定芽的增殖培養(yǎng) 1)選擇經(jīng)初代培養(yǎng)于MS,附加6-芐基腺嘌呤2.0mg/L,萘乙酸0.2mg/L,蔗糖30g/L和瓊脂0.8%的培養(yǎng)基上誘導出的林蔭銀蓮花不定芽,在無菌條件下將其分切成0.5~1.0cm2的芽塊; 2)將步驟1)的芽塊接種于1/2MS,附加6-芐基腺嘌呤1.0mg/L,萘乙酸0.4mg/L,激動素0.5mg/L,水解酪蛋白250~750mg/L,瓊脂0.8%和蔗糖20~30g/L的培養(yǎng)基上,培養(yǎng)溫度為17±2℃,光照強度為3000Lux,光照周期為12h/d,培養(yǎng)周期為30d,以得到不定芽; B、擬球莖誘導 1)選擇經(jīng)A步驟增殖培養(yǎng)后獲得的不定芽為外植體,在無菌條件下去除葉片,將其分切成0.5~1.0cm2的芽塊; 2)將步驟1)的芽塊接種于MS,附加6-芐基腺嘌呤1.0mg/L,萘乙酸0.4mg/L、激動素0.5mg/L,水解酪蛋白500mg/L,瓊脂0.8%和蔗糖20~30g/L的培養(yǎng)基上,培養(yǎng)溫度為17±2℃,光照強度為3000Lux,光照周期為12h/d,培養(yǎng)周期為30d,得到健壯的無菌芽苗; C、生根培養(yǎng) 1)將步驟A或步驟B培養(yǎng)得到的直徑為≥1cm,高為≥1.5cm的不定芽或無菌芽苗為外植體,除去其葉片,將其基部分切為1cm2的芽塊; 2)將步驟1)的芽塊接種于1/2MS,附加萘乙酸0.5mg/L,吲哚丁酸0.5mg/L,瓊脂0.75%和蔗糖20~40g/L的培養(yǎng)基上,培養(yǎng)溫度為4±0.5℃,暗培養(yǎng),培養(yǎng)周期為40d,獲得帶根無菌苗; D、煉苗移栽 1)取步驟C的帶根無菌苗,洗去無菌苗根部的培養(yǎng)基,將所述的無菌苗放入體積比為8∶2的潮土和沙子組成的基質(zhì)中,無菌苗植株上覆蓋紗布,置于5~6℃的冰箱中,7~10d后取出,使其煉苗; 2)將煉苗后的無菌苗培養(yǎng)至芽直徑為≥3cm,再生根條數(shù)為≥6,并移栽于大田中,保持移栽溫度為15℃,(光線強時需遮陰)。
更詳細的技術(shù)方案見《具體實施方式
》中的實施例如下所述。
本發(fā)明的優(yōu)點 (1)以本發(fā)明的培養(yǎng)基對林蔭銀蓮花不定芽進行培養(yǎng),增殖效果顯著,增殖系數(shù)高,可達4.11,高于種苗增殖系數(shù)不小于3.0的植物組織培養(yǎng)工廠化生產(chǎn)要求;增殖出的苗生長旺盛,30d后平均苗高度可達2.76cm,莖葉生長整齊健壯。
(2)本發(fā)明對擬球莖的誘導效果顯著,誘導率為76.5%,且芽苗的生長健壯,可作為林蔭銀蓮花的生產(chǎn)種苗。
(3)與現(xiàn)有技術(shù)相比,本發(fā)明的組培苗生根率為97.2%;生根數(shù)多,平均每株12.6個根;再生根長,平均長度大于1.52cm。
(4)應用本發(fā)明的煉苗移栽方法,林蔭銀蓮花組培苗的移栽成活率至少為95%,當季出苗率大于90%,實現(xiàn)了林蔭銀蓮花的人工繁殖與栽培。
本發(fā)明與申請?zhí)枮?00810197165.7的主要技術(shù)特征和實施效果的比較分析如表1所示。
表1本發(fā)明與現(xiàn)有林蔭銀蓮花組織培養(yǎng)技術(shù)的主要差別

說明本說明書所用的術(shù)語“增殖系數(shù)”是指林蔭銀蓮花增殖培養(yǎng)中外植體的繁殖率,等于試管苗不定芽總數(shù)與產(chǎn)生這些不定芽的外植體總數(shù)的比值。



圖1和圖2是以林蔭銀蓮花不定芽為外植體誘導出的不定芽情況。
圖3和圖4是以林蔭銀蓮花不定芽為外植體誘導出的擬球莖情況。
圖5和圖6是以林蔭銀蓮花無菌苗為外植體誘導出的再生根情況。
圖7和圖8是林蔭組培苗移栽于大田時及出苗后生長情況。

具體實施例方式 下面將結(jié)合實施例對本發(fā)明做進一步說明,但不局限于以下實施例。
實施例1 本實施例1所述培養(yǎng)基的配制方法,林蔭銀蓮花外植體的選擇方法,培養(yǎng)基及外植體滅菌方法,接種和初代培養(yǎng)方法參照朱端衛(wèi)等[3]報道的方法。
本實施例是林蔭銀蓮花無菌芽苗的制備過程,這些芽苗作為培養(yǎng)基篩選的試驗材料。
1)無菌材料的獲得 試驗材料本實施例的實驗材料是野生林蔭銀蓮花(Anemone Flaccida Fr.Schmidt),采自湖北省長陽土家族自治縣銅鼓包自然狀態(tài)生長的野外生長的材料,不需要特別采集和篩選,也可以從市場上獲得。
選擇林蔭銀蓮花根莖帶老組織的長度為1~2cm的休眠芽,流水沖洗30min,濃度為1.5%的多菌靈水溶液浸泡2h,再用自來水沖洗30min,轉(zhuǎn)移至超凈工作臺,用濃度為75%的酒精消毒30~60s,無菌水沖洗1~2遍,再用0.2%升汞溶液消毒8~12min,無菌水沖洗4~5遍。
2)不定芽的誘導 先用無菌濾紙吸去林蔭銀蓮花外植體表面水分,將芽表面的老組織切除,然后從芽中間剖開,將外植體接種到不定芽誘導培養(yǎng)基上(不定芽誘導培養(yǎng)基配方MS培養(yǎng)基,附加6-BA 2.0mg/L、NAA 0.2mg/L、蔗糖30g/L和瓊脂0.8%,滅菌前調(diào)培養(yǎng)基的pH至5.8~6.0,按照常規(guī)方法對培養(yǎng)基進行滅菌。接種后培養(yǎng)室的培養(yǎng)溫度為17±2℃,光照強度3000Lux,光照周期為12h/d)誘導出不定芽。
3)將不定芽誘導培養(yǎng)基上已萌發(fā)的嫩芽切下,即獲得作為林蔭銀蓮花離體培養(yǎng)增殖培養(yǎng)基篩選的試驗材料。
實施例2 在實施例1的基礎(chǔ)上,本實施例公開了在離體培養(yǎng)條件下誘導的林蔭銀蓮花產(chǎn)生不定芽的完整過程。具體方法是在無菌條件(例如在超凈工作臺中,下同)去除在離體培養(yǎng)條件下獲得的林蔭銀蓮花的葉片,將林蔭銀蓮花的帶芽組培物(即多重芽塊)分切為0.5-1.0cm2的芽塊,接種于附加有水解酪蛋白(CH)分別為0、250、500、750、1000mg/L的MS培養(yǎng)基上(每一培養(yǎng)基均附加6-BA 1.0mg/L、NAA 0.4mg/L、KT 0.5mg/L以及瓊脂0.8%,培養(yǎng)基滅菌前調(diào)pH至5.8~6.0,按照常規(guī)方法對培養(yǎng)基進行滅菌),比較林蔭銀蓮花不定芽的增殖系數(shù)和增殖質(zhì)量,篩選出林蔭銀蓮花不定芽增殖的最佳水解酪蛋白的濃度。
然后將MS基本培養(yǎng)基濃度(1/2MS、1/4MS和MS)與蔗糖濃度(10、20、30、40g/L)進行雙因素組合試驗(每一培養(yǎng)基均附加6-BA 1.0mg/L、NAA 0.4mg/L、KT 0.5mg/L、CH 750mg/L以及瓊脂0.8%,pH5.8~6.0),最終篩選并確定適用于林蔭銀蓮花不定芽增殖的培養(yǎng)基。
培養(yǎng)條件培養(yǎng)室培養(yǎng)溫度17±2℃,光照強度3000Lux,光照周期為12h/d。30d后統(tǒng)計增殖系數(shù)、苗高度、莖粗細、葉片大小和顏色等指標。試驗結(jié)果見表2、表3所述。
表2不同濃度水解酪蛋白對林蔭銀蓮花離體不定芽生長的影響
注增殖系數(shù)=30d后觀察總芽數(shù)/接種芽數(shù);+代表苗的長勢,+越多,表示長勢越好,下同。
從表2可以看出,水解酪蛋白在250~750mg/L范圍內(nèi),離體林蔭銀蓮花不定芽的增殖系數(shù)均較高,且試管苗高度沒有顯著差異,其中以水解酪蛋白750mg/L時增殖的效果最好。
表3不同MS培養(yǎng)基濃度與蔗糖濃度組合對林蔭銀蓮花不定芽生長的影響
從表3可以看出,MS培養(yǎng)基濃度相同時,增殖系數(shù)隨著蔗糖濃度的增加,總體呈現(xiàn)先增后降的趨勢,以30g/L時不定芽生長狀況最佳。蔗糖濃度為30g/L,生長在1/2MS和MS培養(yǎng)基上的外植體,生長狀況最佳,其增殖系數(shù)均高于4.0,株高大于3.0cm。綜合各種因素,選定1/2MS培養(yǎng)基和添加30g/L蔗糖作為離體林蔭銀蓮花不定芽增殖培養(yǎng)的基本培養(yǎng)基。
實施例3 將增殖后產(chǎn)生的林蔭銀蓮花不定芽為外植體,去除葉片分切為0.5~1.0cm2的芽塊。將MS培養(yǎng)基濃度(1/2MS、1/4MS和MS)與蔗糖濃度(10、20、30、40g/L)進行雙因素組合試驗(每一培養(yǎng)基均附加6-BA 1.0mg/,NAA 0.4mg/L,KT 0.5mg/L,CH 500mg/L及瓊脂0.8%,滅菌前調(diào)培養(yǎng)基的pH至5.8~6.0),篩選出適宜林蔭銀蓮花擬球莖誘導的培養(yǎng)基及蔗糖濃度。
培養(yǎng)條件培養(yǎng)室培養(yǎng)溫度為17±2℃,光照強度3000Lux,光照周期為12h/d。30d后統(tǒng)計擬球莖的誘導率及其生長狀況。結(jié)果見表4所示。
表4不同MS培養(yǎng)基濃度與蔗糖濃度組合對林蔭銀蓮花擬球莖生長的影響

注擬球莖誘導率=誘導出擬球莖的外植體數(shù)/接種的外植體數(shù)×100%;+代表擬球莖長勢,即+越多,表示長勢越好,下同。
從表4可以看出,在培養(yǎng)基濃度相同條件下,林蔭銀蓮花擬球莖誘導率隨著蔗糖濃度的增加,總體呈現(xiàn)先增后降的趨勢,其中附加20~30g/L的蔗糖培養(yǎng)基中林蔭銀蓮花擬球莖的生長均較佳。蔗糖濃度為30g/L,生長在1/2MS和MS基本培養(yǎng)基上外植體誘導出的擬球莖生長狀況明顯較好,誘導率均高于70%。其中以MS培養(yǎng)基上最佳,誘導率為76.5%,且擬球莖生長最旺盛。綜合各種因素,選定MS基本培養(yǎng)基附加20~30g/L的蔗糖作為林蔭銀蓮花擬球莖培養(yǎng)的培養(yǎng)基。
實施例4 將林蔭銀蓮花無菌芽苗接種在表5所示附加4種濃度蔗糖的生根培養(yǎng)基上,比較生根率和再生根的質(zhì)量,測試不同蔗糖濃度對無菌苗生根的影響,以篩選出適宜生根培養(yǎng)的蔗糖濃度。
具體步驟是將生長旺盛的林蔭銀蓮花不定芽或擬球莖,在無菌條件(超凈工作臺)去除葉片,將其基部分切為1.0cm2的小塊,轉(zhuǎn)接于1/2MS培養(yǎng)基上,均附加NAA 0.5mg/L,IBA 0.5mg/L以及瓊脂0.75%,pH5.8~6.0。
培養(yǎng)條件培養(yǎng)室培養(yǎng)溫度為4±0.5℃,暗培養(yǎng)。40d后統(tǒng)計生根率、根數(shù)、根長和根粗細。試驗結(jié)果見表5所示。
表5不同蔗糖濃度對林蔭銀蓮花無菌苗生根的影響
由表5可知,培養(yǎng)40d后,蔗糖在20~40g/L范圍內(nèi)時,林蔭銀蓮花無菌芽苗的生根率均≥83%,平均根數(shù)>8條,根長>1.2cm,根較粗。其中以蔗糖為30g/L時,再生根質(zhì)量最佳。而蔗糖為10g/L時,林蔭銀蓮花外植體表現(xiàn)出明顯營養(yǎng)不足的現(xiàn)象,顏色變黃,生長停滯。因此,在林蔭銀蓮花工廠化育苗的生根過程中,選擇20~30g/L的蔗糖均可。
實施例5 本實施例在實施例4的基礎(chǔ)上,將增殖培養(yǎng)后生根的林蔭銀蓮花無菌苗進行煉苗移栽,觀察生長狀況并統(tǒng)計其出苗率和成活率。
具體步驟①煉苗。洗去林蔭銀蓮花帶根無菌苗根部的培養(yǎng)基,將其放入潮土和沙子的混合基質(zhì)中(體積比8∶2),在5~6℃的冰箱中進行煉苗,7~10d后取出,頂芽均開始萌發(fā),根不斷伸長;②移栽。從煉苗后的材料中選取芽直徑≥3cm,再生根條數(shù)≥6的無菌苗240株,于2009年11月28日移栽至湖北省長陽土家族自治縣麻池鎮(zhèn)的地烏(即林蔭銀蓮花)栽培試驗基地,保持移栽時溫度為11℃,地表溫度為8℃(光線強時需遮陰)。
定期觀察并記錄出苗數(shù)及莖葉生長狀況,60d后挖出一半,觀察組培苗的根系生長狀況,統(tǒng)計成活率。試驗結(jié)果如表6所示。
表6林蔭銀蓮花組培苗移栽后的生長狀況
注成活率=長出新根的株數(shù)/移栽株數(shù)×100% 結(jié)果表明,培養(yǎng)20d后開始陸續(xù)出苗,2010年3月末觀察時出苗率為90.8%,莖葉生長旺盛;挖出組培苗觀察發(fā)現(xiàn),均長出較多新根,根尖處的白色新生根長度為0.8~1.5cm,成活率為95%。
說明書中培養(yǎng)基的英文縮寫如下6-芐基腺嘌呤(6-BA),萘乙酸(NAA),吲哚丁酸(IBA)激動素(KT),水解酪蛋白(CH)。
參考文獻中國科學院中國植物志編輯委員會編.中國植物志[M].北京人民衛(wèi)生出版社,1988.28。邴飛虹,張國斌.國家五類新藥-地烏風濕安膠囊.湖北中醫(yī)雜志,2005,27(1)48-49。朱端衛(wèi)等,離體快速繁殖地烏的方法[P].中國發(fā)明專利公開說明書,
發(fā)明者耿明建, 王俊, 朱端衛(wèi), 楊特武, 周文兵, 劉保財, 張忠池 申請人:華中農(nóng)業(yè)大學
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